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CL-11细胞 操作说明书
产品名称:CL-11细胞
中文名称:人结肠癌细胞
细胞形态:上皮样,贴壁细胞
传代比例:1:2~1:3
培养体系:DMEM/F12 培养基 推荐HAKATA A19010;20%胎牛血清 推荐HAKATA HN-FBS-500;细胞培养
未加双抗,客户可视实际情况选择添加
STR:Amelogenin X,Y CSF1PO 11 D2S1338 17,19 D3S1358 15,16 D5S818 12 D7S820 9(DSMZ)D8S1179 14D13S317 13,14 D16S539 11,13 D18S51 14 D19S433 14 D21S11 31,32.2 FGA 22,23 Penta
D 9,13Penta E 10,11 TH01 6,9 TPOX 8 vWA 16,17
冻存条件:冻存液:90%FBS,DMSO 10%,或使用非程序冻存液:
细胞接收:
1:观察有无破损漏液情况 ,如有请拍照及时联系客服。
2 :酒精消毒培养瓶表面后显微镜下观察细胞状态 ,观察拍照后不用打开培养瓶盖 ,放入培养箱静止
2- 3小时稳定细胞状态。
3 :请按照细胞操作指南进行第一次传代冻存处理。
4 :产品随货会附带细胞说明书、细胞培养操作指南、STR 鉴定、支原体检测报告。
5 :若产品有异常或其他疑问 ,可随时联系客服
6.收到后,培养条件(完培配置)需跟保持一致,如有变动销售另行告知
仅限于科学研究 ,不可作为动物或人类疾病的治疗产品使用。
细胞复苏:
1) 准备工作:将培养液置 37℃水浴锅预热 30 分钟,随后将冻存的细胞从液氮中取出,转移
到-80℃冰箱,放置数分钟让残余液氮挥发;
2) 在超净台内用吸管吸取 6-7 mL 培养液至 15 mL 离心管中;
3) 将细胞从-80℃冰箱取出暂时放置于干冰里,复苏时稍稍甩动,去除残留的干冰和液氮,再迅速
用镊子夹住盖子放入 37℃水浴中快速晃动(注意:水不能没过盖子),使其在 1 分钟左右
融化;
4) 在超净台内,用酒精棉球擦拭冻存管外壁消毒,稍稍晾干。用单道移液器将所有融化的细胞悬液
转至提前准备好的培养液中,盖上盖子,1100 rpm 室温离心 4 分钟收集细胞;
5) 超净台内小心吸弃上清,用单道移液器吸取 1 mL 新鲜培养液重悬细胞至单细胞悬液,再转
移至装有 4 mL 培养液的 T25 cm2培养瓶 (或者 6cm 的皿) 中,写上细胞名称、复苏日期、
代次,放置 37℃、5% CO2 饱和湿度培养箱内培养。
注意:请勿直接复苏到 T75 cm2瓶或 10cm 的皿。
细胞传代:
1) 常规细胞长至 80%-90%汇合度即可传代。在超净台内把培养瓶里的培养液倒至废液缸,用 1×PBS(T25 cm2培养瓶添加约 2~3mL,T75 cm2培养瓶约 4~5 mL)洗涤细胞 1~2 次,以去除残余的培养液和血清(血清含有胰酶的抑制因子);
2) 加入相应体积的胰酶溶液,具体参考附表 1,轻轻晃动瓶子并使胰酶浸过细胞,将培养瓶放入培养箱孵育 1~2 分钟(若细胞难以消化,可适当延长孵育时间),待在显微镜下观察到大部分细胞变圆不贴壁,轻轻晃动和敲击培养瓶两侧有大量细胞脱离时,立即终止消化;
3) 加入 2 倍胰酶体积的培养液终止消化,并轻吹打细胞数次,使所有细胞脱壁;(注意:吹散细胞时注意要轻柔,尽量不产生气泡或尽可能产生少量气泡。);
4) 用 10 mL 移液管转移细胞悬液到一支 50 mL 离心管中,同一批次的细胞可以合并收集在一起,视情况用适量 PBS 将培养瓶里的残余细胞洗下来,一起加到 50mL 离心管中。盖上盖子,做好标记;
5) 1100 rpm 室温离心 4 分钟,离心后,打开盖子弃上清,加 2mL 培养基重悬细胞;
6) 细胞按照一定的接种比例传代,按照 1:3 进行传代,若细胞在两天内长满可增加传代比例,若细胞生长三四天还未长满,可适当缩小传代比例。
细胞冻存:
1) 按细胞传代的方法,在超净台内把培养瓶里的细胞进行消化至单细胞悬液,加入培养基终止反应。所有液体转移到一支 50 mL 离心管中。
2) 用移液管吹打混合均匀,取 20 μL 进行细胞计数;
3) 1100 rpm 室温离心 4 分钟,离心后,打开盖子倒去上清,用 1~2 mL 4℃预冷的冻存液重悬细胞,随后加入冻存液调整至密度为 1x106-1x107个细胞/mL。
4) 将细胞悬液按 1 mL/管平均分装至冻存管中,旋紧盖子,冻存管应提前贴好细胞名称、细胞代次、数量、冻存日期;
5) 将冻存管放置于 4℃预冷的程序降温盒中,并在冻存结束的 15 分钟之内将程序降温盒放置超低温冰箱内;
6) ge夜后,将冻存细胞转移至液氮罐内保存。
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